间接 ELISA 检测抗 SARS-CoV-2 Spike RBD 抗体的结合

间接 ELISA 检测抗 SARS-CoV-2 Spike RBD 抗体的结合

September 3, 2026

本文总结了以重组 SARS-CoV-2 Spike 受体结合域(receptor-binding domain, RBD)为包被抗原的间接 ELISA 流程,该流程用于评估血清或单克隆抗体与 RBD 的结合强度与效价。

主要流程和原理为:抗原包被于 96 孔板后,依次加入封闭液、梯度稀释的一抗(血清或抗体)、HRP 标记的抗人 IgG 二抗,最后以 ABTS 底物显色并在 405 nm 读取吸光度。

Note

文中以检测人源血清 IgG 结合为例(二抗为抗人 IgG-HRP)。若一抗为鼠源或其他种属抗体,将二抗换成对应的抗种属二抗即可,其余流程不变。


一、 实验原理与设计要点

间接 ELISA 通过"包被抗原 → 一抗(待测抗体)结合 → 酶标二抗识别一抗 → 底物显色"层级放大,将抗体的结合量转化为可定量的吸光度。

设计上需要特别注意三点:

  • 包被抗原量不能过低:RBD 包被浓度不足时,即使血清效价较高,信噪比也会显著下降。本流程使用约 5 µg/mL 包被。
  • 封闭时间对背景影响大:2% BSA 封闭 2 h 产生的背景明显低于封闭 1 h,本流程固定为室温 2 h。
  • 血清起始浓度不能过稀:血清样本从 1:10(或 1:100)起始(PBS 稀释),再在 U 底 96 孔板中做梯度滴定后转移至检测板。

二、 材料、试剂与缓冲液

1. 试剂与耗材

物料 用途 规格/说明
重组 SARS-CoV-2 S-RBD 蛋白 包被抗原 HEK293 细胞表达的可溶性 RBD
96 孔酶标板 反应板 Corning 9018
U 底 96 孔板 血清/抗体梯度稀释 Nest
抗人 IgG(H+L)-HRP 二抗 检测抗体 Thermo Fisher 31410(Goat anti-Human IgG (H+L), HRP)
ABTS 底物溶液 显色 即用型 ABTS 溶液(Thermo Fisher 002024)
封闭用 BSA 封闭液成分 高纯度 BSA,配成 2%(w/v)
封板膜/盖 防蒸发 包被过夜与各孵育步加盖
多道移液器 洗涤与加样 8/12 道
纸巾/吸水纸 拍板去液 每次洗涤后彻底拍干
酶标仪 读板 能读 405 nm 的吸光度

2. 缓冲液配方

缓冲液 配方 用途与备注
包被缓冲液(coating buffer) PBS 常用配方
洗涤液 PBST PBS(pH 7.2)含 0.05%(v/v)Tween-20 0.05%
封闭液 DPBS 中 2%(w/v)BSA,0.22 µm 过滤 同时用作二抗稀释液

3. 稀释液与基质

  • 一抗/血清稀释:PBS(人血清首孔 1:10(或 1:100)起)。
  • 二抗稀释:用封闭液(2% BSA/PBS)稀释,避免单独加 BSA。

三、 操作流程

全部孵育均在湿盒/加盖条件下进行,避免边缘孔蒸发。默认每孔终体积见各步;同一板建议做重复孔。

1. 包被(4 ℃ 过夜)

  1. 用包被缓冲液将 RBD 稀释至 5 µg/mL。
  2. 向 96 孔板加入 50 µL/孔。加样后轻拍/轻晃使液面铺匀(避免边缘挂壁)。
  3. 盖上封板膜,4 ℃ 孵育过夜(约 16–18 h)。

Important

若更换抗原批次或改用截短抗原,先用 2–3 个已知阳/阴性样本做浓度梯度(如 2.5/5/10 µg/mL)预实验,确认包被浓度仍能给出足够信噪比。抗原量偏低会显著压低信噪比。

2. 洗涤(3 × 200 µL PBST)

  1. 弃去孔内液体(直接倒出或甩出)。
  2. 每孔加入 200 µL PBST,随后完全去除液体:将板倒扣在干净纸巾上拍打数次,必要时轻甩 5 次后再次拍干。
  3. 重复洗涤共 3 次。每次都要彻底拍干,残留液会抬高背景。

3. 封闭(室温 2 h)

  1. 每孔加入 200 µL 封闭液(2% BSA/DPBS)。
  2. 盖板,室温孵育 2 h。

4. 洗涤

同步骤 2(3 × 200 µL PBST,拍干)。

5. 一抗(血清/抗体)孵育(室温 1 h)

  1. 在 U 底 96 孔板中用 PBS 将待测样本梯度稀释。人血清样本从 1:10 起始(按样本类型调整)。
  2. 将稀释好的样本按 50 µL/孔转移至已封闭的检测板。
  3. 盖板,室温孵育 1 h。

Tip

每板应包含:阴性对照(如已知阴性血清/无关抗体)、空白(仅 PBS,作为本底)与(可选)阳性对照。U 底板稀释后建议立即转移,避免长时间放置。

6. 洗涤

同步骤 2。

7. 二抗孵育(室温 1 h)

  1. 用封闭液将抗人 IgG-HRP 稀释至 1:5000。
  2. 每孔加入 50 µL,盖板,室温孵育 1 h。

8. 洗涤

同步骤 2(建议最后一次洗涤后拍干更彻底)。

9. 显色

  1. 每孔加入 100 µL ABTS 底物。
  2. 室温、避光孵育。设定初始 10 min,期间不时观察显色:至阴性/空白对照仍浅、阳性孔呈明显绿色时即可终止读数;显色过快则缩短时间。
  3. 若显色不足,可延长至 15–30 min(随时间线性增长时进行多时间点读取更稳妥)。

10. 读板

在 405 nm 读取吸光度并记录。

Note

ABTS 为终点法/动力学法均可的底物;若使用同一板做多时间点(如 10/15/20/30 min)读取,可观察是否已进入平台期。

四、 稀释方案与板布局

1. 96 孔板布局

每列对应一个样本,8 个稀释度沿行 A–H 纵向铺布(3 倍比)。第 1 列留作阴性血清对照、第 2 列作空白(PBS)对照,其余列放待测样本。

行 第 1 列(阴性血清) 第 2 列(空白) 第 3 列(样本 1) 第 4 列(样本 2) …
A 1:10 PBS D1 D1 …
B 1:30 — D2 D2 …
C 1:90 — D3 D3 …
D 1:270 — D4 D4 …
E 1:810 — D5 D5 …
F 1:2430 — D6 D6 …
G 1:7290 — D7 D7 …
H 1:21870 — D8 D8 …

(D1–D8 表示 8 个 3 倍比稀释度;抗体样本的纵轴单位为 µg/mL,见下表。)

2. 稀释梯度

在 U 底 96 孔板中做 3 倍比、共 8 个点的梯度稀释,再转移至检测板。

样本类型 起始浓度/稀释度 8 点梯度(3 倍比)
单克隆抗体 10 µg/mL 10、3.33、1.11、0.37、0.123、0.041、0.0137、0.0046 µg/mL
血清 1:10(或 1:100) 1:10、1:30、1:90、1:270、1:810、1:2430、1:7290、1:21870

五、 数据记录与判定

1. 数据处理

  1. 以空白(仅 PBS)孔均值作为本底,从所有读值中扣除。
  2. 以稀释度为横轴(log 坐标)、OD₄₀₅ 为纵轴绘制滴定曲线。

2. 常见质控信号

  • 若阴性对照在 1:10 已明显偏高 → 洗涤不彻底或封闭不足,见"问题排查"。
  • 若已知阳性样本的信号整体偏低 → 检查包被抗原浓度/活性与二抗稀释度。

六、 竞争 ELISA(变体方法)

同一抗原体系下,可通过改变检测读出方式扩展为竞争 ELISA,用于判断两株抗体是否识别相近表位,或待测抗体能否阻断某一参照结合事件。以下为依据实验记录整理的流程:

步骤 要点
包被 RBD/Spike 蛋白 5 µg/mL,100 µL/孔,4 ℃ 过夜
洗涤/封闭 PBST 3×200 µL → 2% BSA 200 µL/孔,室温 2 h
一抗(预结合) 待测抗体/血清梯度稀释(具体浓度需摸索),室温 2 h
竞争抗体 直接加入生物素化参照抗体(不洗涤),室温 30 min;降低其浓度可让竞争更敏感
洗涤 PBST 7 次
检测 Streptavidin-HRP 1:5000(封闭液稀释)50 µL/孔,室温 1 h
显色/读板 PBST 洗 3 次 → ABTS 100 µL/孔 → 405 nm(可 10/20/30 min 多点读取)

竞争值计算:竞争值 = OD(样本孔) / OD(PBS 孔) × 100%。OD 越低说明待测抗体与生物素化参照抗体的表位越重叠。

七、 问题排查

现象 可能原因 处理建议
信噪比低、阳性信号弱 包被抗原量不足/抗原活性下降 提高包被浓度或换新抗原批次;验证抗原纯度与正确折叠
背景高(阴性也高) 洗涤不彻底、封闭不足、二抗过浓 每次拍干彻底;封闭保证室温 2 h;二抗降到 1:5000 或更低并做棋盘滴定
边缘孔读值偏高 蒸发/边缘效应 仅用中间孔加样本,外圈加 PBS 或封板
重复孔差异大 移液或洗涤不均 用多道排枪、规范拍板;样本先在 U 底板混匀
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参考来源

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